RNase R是一种来源于大肠杆菌RNR超家族的3’-5’核糖核酸外切酶,可从3’-5’方向将RNA逐步切割成二核苷酸和三核苷酸。RNase R可消化几乎所有的线性RNA分子,但不易消化环形RNA、套索结构或3’突出末端少于7个核苷酸的双链RNA分子。
RNase R是circRNA的鉴定和富集实验必备工具酶,可消化线性RNA以使环形RNA(circRNAs)或套索结构RNA(lariat RNA)得到富集。
图1.RNase R消化RNA示意图
1. circRNA的鉴定
根据RNase R(+)和RNase R(-)组中是否检测到条带来证明检测的分子是否是circRNA。
图2.RNase R消化后RT-PCR检测Lariat/Circular RNA
在图2中,检测mRNA在RNase R(-)中有条带,在RNase R(+)中无条带;检测Lariat/Circular RNA,在RNase R(-)和RNase R(+)样品中都有条带,表明mRNA被消化,而Lariat/Circular RNA耐受消化(Suzuki H et al., 2006)。
2. circRNA的富集
高通量测序时常需要对circRNA进行富集,为探究RNase R消化后circRNA的富集程度和相关基因的变化,可以同时做RNase R(+)和RNase R(-)组样品的测序。
图3.RNase R(+)和RNase R(-) RNA测序示意图(Jeck WR et al., 2014)
有研究报道,测序显示RNase R(+)组中Junction Reads相对于RNase R(-)样本有5-10倍的富集,可鉴定出几千到上万个circRNAs(图3)。
3.circRNA的纯化
消除线性RNA残余的干扰,是人工合成高纯度circRNA的关键。高效的RNase R不仅是连接酶法circRNA人工合成的关键工具,在内含子自剪切的circRNA人工合成中也是必不可少的。
图4. 吉赛生物circPrecise™平台制备环状RNA产物(“纯化产物”使用GSPure® RNase R纯化)
特异性强:特异性消化线性RNA;
高效快速:5-15min即可消化大部分线性RNA;
Buffer兼容:消化产物可直接用于下游实验;
使用方便:体系简单,37℃一步反应。
SDS-PAGE 检测纯度>95%;Total RNA经RNase R消化后进行RT-qPCR检测,线性 RNA丰度明显降低,环形RNA丰度基本不变。
1.RNA电泳检测
将10U RNase R加入到2.5 μg Total RNA中,于37℃孵育15 min后直接进行电泳检测,结果显示RNase R(+)组条带变淡(不可见),表明RNase R对Total RNA产生消化作用。吉赛和公司A或公司E的RNase R对Total RNA消化效果相当。
3.RT-qPCR检测
将10U RNase R加入到2.5 μg total RNA中,于37℃孵育30 min后进行RT-qPCR实验,结果显示RNase R+组β-actin和FGFR2的丰度都明显降低,表明RNase R可消化线性RNA。吉赛和公司E的RNase R对线性RNA消化效果相当,优于公司A的RNase R。
将10U RNase R加入到2.5 μg total RNA中,于37℃孵育30 min后进行RT-qPCR实验,结果显示RNase R+ 组中hsa_circFOXO3_002和hsa_circMTO1_001的丰度基本不变,表明circRNA耐受RNase R的消化。吉赛和公司E或公司A的RNase R效果相当。
注:数据计算以“RNase R+吉赛”组为对照,设定其相对丰度值为1。
案例1:
2022年7月21日,西北大学生命科学学院关锋教授团队在C1GALT1在膀胱癌中的生物功能及其调控机制的研究中取得了新进展,研究结果发表在Journal of Experimental & Clinical Cancer Research,题名“Dysregulation and prometastatic function of glycosyltransferase C1GALT1 modulated by cHP1BP3/ miR-1-3p axis in bladder cancer”。
研究团结队使用RNase R(R0301,吉赛生物)检测了7个DEcircRs对RNase R消化的敏感性,以排除可能通过反式剪接、基因组重排或PCR产物产生的头尾剪接。证明DEcircRs对RNase R的抗性均高于GAPDH对照。
案例2:
2022年8月12日,北京大学基础医学院张卫光教授团队在Redox Biology杂志在线发表了题为“CircSV2b participates in oxidative stress regulation through miR-5107-5p-Foxk1-Akt1 axis in Parkinson's disease”的研究论文。该研究发现circRNA分子 circSV2b在帕金森病(Parkinson's disease,PD)发病过程中发挥着重要作用,并揭示了其作用机制。
研究团结队使用RNase R(R0301,吉赛生物)处理显著降低线性SV2b和β-Actin的mRNA水平,而circSV2b的量未观察到明显的改变,证明circSV2b是一个高度稳定且内含子保留的环状RNA。
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1.RNase R消化成功的标准?
建议RNA经RNase R消化后取一部分直接进行电泳检测,28、18S条带变淡说明消化成功。(电泳结果比较直接,可观测到消化成功,若不成功就是有问题)
2.RNase R实验怎样设计对照组?
参考下图多几个分组和对照,排除下影响因素。(增加多个对照,可以排除和找出异常情况的原因)
3.RNase R实验的条件?
消化时间和RNase R用量可能需要预实验摸索,找到合适的条件,让线性RNA被消化而 circRNA保持不变。一般37℃消化15min,检测内参的Ct值延后5~10都是比较成功的结果。(考虑消化不够或过头,或者结果数值不好看,可以做预实验摸索)
4.RNase R引物检测的问题?
注意检测引物的特异性问题。注意区分circRNA和mRNA的同源序列。(引物有非特异扩增的时候,检测结果数值完全不可能,任何说消化无效果或效果过头都不可信)
5.CircRNA数量不变,算成功吗?
总RNA被消化后,线性RNA数量减少,circRNA数量基本不变,则其中circRNA的比例增加了,即circRNA被富集了,后面qPCR检测circRNA的丰度有可能会偏高,是正常的。
6. RNase R消化后如何回收RNA?
RNase R消化后消化液如果回收,图方便可以使用Trizol回收,按说明书操作即可。如果不回收直接进行逆转录的,吸取消化液的体积不能超过逆转录体系的1/4,因为消化液中残留的离子等会干扰下游的RT-qPCR反应。例如逆转录是20ul体系,则吸取的RNase R消化液不能超过5ul。
7.RNase R消化不成功怎么办?
使用新的试剂盒或试剂重新提取RNA,保证RNA的纯度和质量。(RNA的纯度高才能消化效率高,酚类等残留会明显影响消化效果,gDNA污染也会减弱消化效果)
8. RNase R如何储存
当天内使用的,RNase R(20U/ul)可以用无酶水稀释,长期使用的,应该用Storage Buffer稀释,配方在说明书里有。(用量少时体积小,有客户想稀释使用)
9.RNase R消化有什么注意事项
配置Nuclease-free的试剂,需要使用Nuclease-free的水、吸头等试剂耗材,或者用DEPC处理过的水,另外实验台面(建议全程超净台内或生物安全柜内)也要用核酸酶清除剂喷雾和擦拭处理,这些都是做RNA实验的配置。
10.RNase R消化的特殊情况
特殊情况:有的线性RNA耐受消化,有的circRNA也容易被消化。
11.RNase R消化后不用纯化,直接跑胶,是否可以?
可以的。还能评估下消化效果,28、18S条带变淡说明消化成功。
另,直接进行RT-PCR的,一般也可以不做纯化,酶失活后直接进行逆转录反应即可。
12.消化反应中RNase R使用多少比较合适?
不同参考文章里RNase R的使用量和反应体系都有差别,最常见的是20 μL反应体系,使用比例为1-4 U RNase R/μg RNA,实验中可能需要摸索调整。
13.RNase R消化反应温度和时间设定多少?
RNase R消化一般于37℃进行反应,一般10-30 min即可消化掉大部分线性 RNA。常用5-15 min消化就能得到很好的结果。
14.RNase R消化反应后要不要灭活?
经RNase R消化后直接进行逆转录反应的,推荐在37℃反应结束后保持70℃ 10 min使RNase R灭活(也有65℃ 15min)。如果消化后要进行纯化回收,也可以不做灭活。
15.RNase R消化鉴定
样本RNase R消化前后取一部分直接进行电泳检测,可直观查看抽提的RNA质量及Rnase R消化效果,28、18S条带变淡说明消化成功。若RNA纯度不高,28S/18S条带可能有凹型拖尾。若RNA有gDNA污染,可能残留gDNA条带。
16.RNase R消化反应条件?
不同的circRNA对RNase R的耐受性不同,具体反应时间需要自行摸索。一般反应时间为10-30 min,不推荐过长时间的消化。个别circRNA耐受RNase R消化力弱。对此,可以减少消化时间。
17.RNase R消化后需要测定产物浓度吗?
不可直接测定RNA浓度,因为反应体系内的蛋白质、盐离子等成分会导致RNA浓度测定不准确。建议先纯化RNA再测定浓度。
18.RNase R消化后产物处理:
直接进行逆转录反应的,推荐RNase R灭活。灭活条件为:70℃保持15min。吸取消化液的体积不能超过逆转录体系的1/4,因为消化液中残留的离子等会干扰下游的RT-qPCR反应。例如逆转录是20ul体系,则吸取的RNase R消化液不能超过5ul。
如果消化后要进行纯化回收,也可以不做酶的失活。